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流式细胞术做为一种快速的细胞定量分析技术，能够同时对单个细胞进行多种特征参数的检测，如细胞大小、DNA含量、蛋白质表达等，现已成为科研领域中不可或缺的重要工具。

流式检测能顺利进行的硬要求之一是，样本必须能在鞘液中流动，因此，无论是培养的细胞，还是从各种组织中提取出来的细胞，都需要把待测样本制备成单细胞悬液!制备欠妥的样本，不仅会直接影响实验的准确性和结果的可靠性，一些大的细胞团块甚至会堵塞液流系统而影响仪器的正常运行。

实验过程

1、取啤脏

颈椎脱臼法处死小鼠;在解剖台上固定小鼠，从底端小心剪开小鼠整个腹部皮肤，暴露出小鼠腹膜;剪开小鼠腹膜，暴露出啤脏，摘取，并充分去除上面的脂肪组织;将取下的啤脏剪碎，置于预冷的PBS中浸泡待用

2、制备单细胞

使用净信单细胞悬液制备仪，设置参数，点击启动，程序结束后加入终止液

3、裂解红细胞

在离心后的细胞悬液中加入ACK红细胞裂解液，重悬细胞，在室温裂解5min

4、过滤洗涤

通过过滤网过滤，将过滤后的细胞悬液收集至离心管中，离心5min，去除上清液

5、单细胞计数

显微镜观察细胞，使用染色缓冲液重悬细胞调整细胞浓度，吸取细胞悬液至流式管中，准备染色

结果分析：

小鼠啤脏活率99%，方便后续进行流式分析。

注意事项：

1.组织尽量剪碎，消化效果更好

2.摘取啤脏后，尽可能移除黏连的脂肪组织，提高啤脏细胞的占比

3.建议使用新鲜配制的红细胞裂解液

4.消化后的细胞应洗涤干净，否则影响流式效果

单细胞悬液制备仪不仅效率高、温和，保护细胞活性，还精准可控，适应不同组织类型。高通量设计，提升实验效率，对于需要处理多个样本的研究项目，单细胞悬液制备仪的高通量设计可以同时处理多个样本，大幅缩短实验时间。选择合适的仪器，可批量制备单细胞悬液，节约了实验时间，根据需求选择仪器中人体、小鼠各个组织、器官对应程序，提高了单细胞悬液制备的活率和得率，使后续实验进行更加顺利。