zFluor 633 琥珀酰亚胺酯

简要概述

zFluor 633 琥珀酰亚胺酯是美国AAT Bioquest生产的荧光染料，与市场上其他类似波长染料相比，我们开发的zFluor 系列染料在给定波长下具有可能高的光稳定性。zFluor 647具有与流行的Cy5®（GE Healthcare）和AlexaFluor®647（ThermoFisher）几乎相同的光谱特性。其高热和光稳定性使其成为单分子检测应用和高分辨率显微镜（如PALM，dSTORM和STED）的理想选择。在相同的测试条件下，zFluor 647具有比Cy5®和AlexaFluor®647高得多的臭氧稳定性，使其成为微阵列和其他生物芯片应用的更好选择。此外，zFluor 标记的寡核苷酸和多肽比AlexaFluor®647和Cy5®标记的更亮，更光稳。该特征对于荧光原位杂交（FISH）非常有用。它在633 nm的He-Ne激光器，氪的647 nm线处受到很好的激发。 -Ion激光器或发射650 nm的二极管激光器。百萤生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供优质的zFluor 633 琥珀酰亚胺酯。

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产品说明书

染色样本分析

操作步骤

1.准备蛋白质储备溶液（溶液A）：

将100μL反应缓冲液（如1 M碳酸钠溶液或1 M磷酸盐缓冲液，pH~9.0）与900μL目标蛋白溶液（如抗体，蛋白质浓度> 2 mg / ml，如果可能）混合至100μL给予1 mL蛋白质标记原液。

注1：蛋白质溶液（溶液A）的pH值应为8.5±0.5。如果蛋白质溶液的pH低于8.0，则使用1M碳酸氢钠溶液或1M pH 9.0磷酸盐缓冲液将pH调节至8.0-9.0的范围。

注2：蛋白质应溶解于pH7.2-7.4的1X磷酸盐缓冲盐水（PBS）中。如果蛋白质溶解在Tris或甘氨酸缓冲液中，则必须用pH7.2-7.4的1X PBS透析，以除去广泛用于蛋白质沉淀的游离胺或铵盐（例如硫酸铵和乙酸铵）。

注3：用牛血清白蛋白（BSA）或明胶稳定的不纯抗体或抗体不能很好地标记。

注4：如果蛋白质浓度低于2 mg / mL，则结合效率会显着降低。为获得标记效率，建议极终蛋白质浓度范围为2-10 mg / mL。

2.准备染料储备溶液（溶液B）：

将无水DMSO加入到iFluor 染料SE小瓶中以制备10-20mM储备溶液。通过移液或涡旋混合均匀。

注意：在开始缀合前准备染料储备溶液（溶液B）。及时使用。染料储备溶液的长期储存可降低染料活性。溶液B可在冰箱中保存两周，避光保存。避免冻融循环。

3.确定染料/蛋白质比例（可选）：

注意：每种蛋白质都需要不同的染料/蛋白质比例，这也取决于染料的性质。蛋白质的过度标记可能不利地影响其结合亲和力，而低染料/蛋白质比率的蛋白质缀合物会降低灵敏度。我们建议您通过使用连续不同量的标记染料溶液重复步骤4和5来实验确定染料/蛋白质比率。通常，对于大多数染料 - 蛋白质缀合物，推荐使用4-6种染料/蛋白质。

3.1使用10：1摩尔比的溶液B（染料）/溶液A（蛋白质）作为起始点：将5μl染料储备溶液（溶液B，假设染料储备溶液为10 mM）加入到样品瓶中。蛋白质溶液（95μl溶液A）有效摇动。假设蛋白质浓度为10mg / mL并且蛋白质的分子量为~200KD，蛋白质的浓度为~0.05mM。

注意：蛋白质溶液中DMSO的浓度应<10％。

3.2运行缀合反应（参见下面的步骤4）。

3.3重复＃3.2，溶液B /溶液A的摩尔比为5：1;分别为15：1和20：1。

3.4使用预制的旋转柱纯化所需的缀合物。

3.5计算上述4种结合物的染料/蛋白质比（DOS）（见说明书）。

3.6运行上述4种结合物的功能测试，确定的染料/蛋白质比例，以扩大标记反应。

4.运行结合反应：

4.1有效加入适量的染料储备溶液（溶液B）到蛋白质溶液（溶液A）的小瓶中晃动。

注意：溶液B /溶液的摩尔比由步骤3.6确定。如果跳过步骤3，我们建议使用10：1溶液B（染料）/溶液A（蛋白质）的摩尔比。

4.2继续在室温下旋转或摇动反应混合物30-60分钟。

5.纯化缀合物